Skip to main navigation menu Skip to main content Skip to site footer

Research Articles

Vol. 3 No. 1 (2020): March-September

Cell viability evaluation of vero cells viability cultured on different chitosan films: development of functional biodressings possibilities

DOI
https://doi.org/10.25061/ijamb.v3i1.65
Published
2020-01-03

Abstract

Os biomateriais utilizados na medicina regenerativa devem ter biocompatibilidade e ser atóxicos, pois são utilizados em contato com tecidos vivos para reparo ou reposição. Portanto, eles devem fornecer um microambiente adequado para ex vivocultura de células. A quitosana é um biomaterial muito utilizado em pesquisas de cultura de células por ser atóxico, biocompatível, biodegradável, apresentar alta hidrofilicidade e apresentar importantes características antibacterianas. Este trabalho estudou a interação de células VERO com filmes de quitosana produzidos com diferentes agentes de reticulação, avaliando a viabilidade e morfologia celular. Os ensaios foram seguidos durante 96 horas para análise da proliferação celular, viabilidade e morfologia. As células apresentaram desenvolvimentos distintos nos diferentes filmes, sendo o filme com ácido acético o menos adequado para cultivo apresentando viabilidade celular de 58%, por outro lado, filmes feitos a partir de soluções de quitosana com ácido lático ou cítrico tiveram viabilidade celular em torno de 70% . Portanto, filmes de quitosana podem ser explorados como biomateriais para a produção de biodressing,

References

  1. Amaral JB, Machado-Santelli G. A cultura de células em 3 dimensões e a sua aplicação em estudos relacionados a formação do lúmen. Naturalia. 34: 1–20 (2011).
  2. Bhadriraju K, Chen CS. Engineering cellular microenvironments to improve cell-based drug testing. Drug Discov Today. 11:612–620 (2002). DOI:10.1016/s1359-6446(02)02273-0.
  3. Campana-Filho S, Britto D, Curti E et al. Extração, estruturas e propriedades de alfa- e beta-quitina. Química Nova. 30 :644–650 (2007). DOI:10.1590/s0100-40422007000300026
  4. Chandy T, Sharma C. Chitosan-as a Biomaterial. Biomaterials, Artificial Cells, and Artificial Organs. 18 :1–24 (1990). DOI:10.3109/10731199009117286
  5. Fráguas RM, Simão AA, Faria PV, Queiroz ER, Junior ENO, Abreu CMP. Preparo e caracterização de filmes comestíveis de quitosana. Polímeros. 25: 48–53 (2015). DOI:10.1590/0104-1428.1656
  6. Junior ARS, Wada MLF. Polímeros biorreabsorvíveis como substrato para cultura de células e engenharia tecidual. Polímeros. 17: 308–317 (2007). https://dx.doi.org/10.1590/S0104-14282007000400010.
  7. Junqueira LC.; Carneiro J. Biologia celular e molecular. 9.ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, pp. 3-4, (2013).
  8. Kim SK, Park PJ, Yang HP, Han SS. Subacute toxicity of chitosan oligosaccharide in Sprague-Dawley rats. Arzneimittelforschung, 51: 769–774 (2001). DOI:10.1055/s-0031-1300113
  9. Laranjeira MCM, Fávere VT. Quitosana: biopolímero funcional com potencial industrial biomédico. Química Nova. 32 : 672–678 (2009). DOI:10.1590/s0100-40422009000300011
  10. Matica MA, Aachmann FL, Tøndervik A, Sletta H, Ostafe V. Chitosan as a Wound Dressing Starting Material: Antimicrobial Properties and Mode of Action. Int J Mol Sci. 20 :5889 (2019). DOI:10.3390/ijms20235889
  11. McNaught AD, Wilkinson A. IUPAC Compendium Of Chemical Terminology. [Cambridge, England]: Royal Society of Chemistry (2000). https://doi.org/10.1351/goldbook.
  12. Miguel SP, Moreira AF, Correia IJ. Chitosan-based-asymmetric membranes for wound healing: A review. Int J Biol Macromol. 127: 460–475 (2019). DOI:10.1016/j.ijbiomac.2019.01.072
  13. Molinaro EM, Caputo LFG, Amendoeira MRR. Conceitos e métodos para a formação de profissionais em laboratórios de saúde vol. 3. Fundação Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, pp 1 – 304. (2013). ISBN: 85-98768-41-0.
  14. Moraes AM, Augusto EFP, Castilho LR. Tecnologia do cultivo de células animais: de biofármacos à terapia gênica. 1 ed. São Paulo, pp. 15–41 (2008).
  15. Oryan A, Sahvieh S. Effectiveness of chitosan scaffold in skin, bone, and cartilage healing. Int J Biol Macromol, 104:1003–1011 (2017). DOI:10.1016/j.ijbiomac.2017.06.124
  16. Patrulea V, Ostafe V, Borchard G, Jordan O. Chitosan as a starting material for wound healing applications. Eur J Pharm Biopharm, 97:417–426 (2015) DOI:10.1016/j.ejpb.2015.08.004
  17. Pires ALR, Bierhalz ACK, Moraes AM. Biomaterials: types, applications, and market. Química Nova. 37: 957–971(2015). DOI:10.5935/0100-4042.20150094
  18. Rabello L, Trindade V, Oliveira E, Fabrino DL. Development of scaffolds based on chitosan, type I collagen, and hyaluronic acid as a biomaterial for three-dimensional cell culture. Congresso Da Sociedade Latino Americana De Biomateriais, Orgãos Artificiais E Engenharia De Tecidos. São Paulo. 14: 348–357 (2017)
  19. Ryan JA. Growing more cells: A simple guide to small volume cell culture scale-up. Presentation presented at the: Massachusetts. (2005). https://www.corning.com/catalog/cls/documents/application-notes/CLS-AN-064.pdf
  20. Utyama IKA. Avaliação da atividade antimicrobiana e citotóxica in vitro do vinagre a ácido acético: perspectiva na terapêutica de ferida. Escola de Enfermagem de Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo, Ribeirão Preto (2003).
  21. DOI: 10.11606/D.22.2003.tde-21052004-114541
  22. Valk JVD, Brunner D, Smet KD et al. Optimization of chemically defined cell culture media – Replacing fetal bovine serum in mammalian in vitro methods. Toxicology in Vitro 24:1053-1063 (2010). DOI:10.1016/j.tiv.2010.03.016
  23. Vert M, Li SM, Spenlehauer G, Guerin P. Bioresorbability and biocompatibility of aliphatic polyesters. Journal of Materials Science: Materials in Medicine. 3: 432–446 (1992). DOI:10.1007/bf00701240
  24. Yoshida CMP, Maciel VBV, Mendonça MED, Franco TT. Chitosan tailor-made films: the effects of additives on barrier and mechanical properties. Packaging Technology and Science. 22:161–170 (2008). DOI:10.1002/pts.839

Downloads

Download data is not yet available.

Metrics

Metrics Loading ...